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常用培养基
LB培养基 配 方 Typtone 1% Yeast extract 0.5% NaCl
1%
Amp选择培养基加量:50μg/mL Amp。 YPD培养基 配 方 Typtone 2% Yeast extract 1% D-glucose 2% 半乳糖培养基 Typtone 2% Yeast extract 1% D-galactose
2%
抗性培养基抗生素加量: G418:350 μg/ml;5-FOA培养基的配置(100mL)
① 50mL 5-FOA-YNB培养基(过滤除菌) 50mL 5-FOA 125mg Ura 5mg YNB 170mg 硫酸铵 0.5g 脯氨酸 100mg 葡萄糖 2g H2O
50mL
② 50mL琼脂溶液(高压灭菌)
称取2.0g琼脂粉,加入50mL水,高压灭菌。
Zeocin:150 μg/ml 常用实验方法
酵母电转化方法:
(1) 酵母于YPD平板上活化后,接种3mLYPD液体培养基,30℃ 200r/min培养8h左右。 (2) 取0.1mL种子液转接至30mL新鲜的YPD液体培养基,30℃ 100r/min继续培养10h
左右,至菌液OD600在1.2~1.5之间。
(3) 6000r/min 4℃ 离心5min收集菌体,用20mL无菌水离心洗涤菌体1次。
(4) 用15~20mLDTT溶液重悬菌体,30℃水浴放置60min,6000r/min 4℃ 离心5min收集
菌体。
(5) 用20mL 4℃预冷的1M山梨醇溶液重悬菌体,6000r/min 4℃ 离心5min洗涤菌体。 (6) 重复步骤(5)三次,共四次。
(7) 用1mL 1M山梨醇重悬菌体,转移至1.5mL离心管,离心后收集菌体,加入与菌体近
似等体积的1M山梨醇重悬菌体。
(8) 每个转化取80μL菌液,加入10μL转化片段或质粒,20μL鲑鱼精DNA,混匀后转入
电击杯,冰上放置5min后,1.5kv电击。
(9) 加入0.9mL含山梨醇的YPD培养基将电转液洗出,30℃ 100r/min复苏2h。 (10)将菌液离心后弃上清,用1M山梨醇洗涤一次,用与菌体近似等体积的1M山梨醇重
悬菌体,取100μL菌液涂布选择性培养基平板,30℃培养至菌落长出。
酵母基因组快速分离方法:
(1) 取1mL30℃,200rpm过夜活化的菌液,10000rpm离心1min,弃上清; (2) 0.5mL无菌水重悬菌体,离心弃上清;
(3) 加入0.2mL破菌缓冲液,与菌体等体积的玻璃珠和0.2mL酚/氯仿,涡旋振荡5min; (4) 加入0.2mLTE Buffer,快速振荡,高速离心5min;
(5) 吸取上清转移至新的离心管,加入0.2mL酚/氯仿,重复抽提至无中间沉淀相; (6) 加入1mL无水乙醇,颠倒混匀;
(7) 12000rpm离心5min,弃上清,沉淀用50μL TE缓冲液或水溶解;
T克隆实验安排表
T-cloning experiments schedule实验内容 1)将大肠杆菌JM109接入LB液体培养基中,180r/min,37℃培养过夜(10h) 2)按1:100的比例将培养一天的大肠杆菌接入另一个LB液体培养基中,180r/min,37℃培养2-3h 3)取1mL菌液于1.5mL离心管中,冰浴15min,10000r/min,4℃,离心1min 4)去掉上清液,加入1000μL 0.1mol/L CaCl2,用移液枪将菌体吹起混匀,冰浴15min后,10000r/min,4℃,离心1min 5)重复步骤4的操作 6)去掉上清液,加入100μL 0.1mol/L CaCl2,用移液枪将菌体吹起混匀,冰浴,第二天备用 7)在微量离心管中配制下列溶液,全量为5μL pMD18-T Simple Vector 0.5μL PCR产物 4.5μL(提前将PCR实验完成,) 8)加入5μL的Solution Ⅰ 9)16℃水浴锅反应4h-16h 10)将微量离心管中反应结束的溶液加入至100μLJM109感受态细胞中,冰浴30min 11)42℃加热90s,再冰浴3-5min 12)加入890μLLB液体培养基,37℃,150r/min振荡培养1h 13)培养结束后,10000 r/min离心1min,倒掉大部分上清液,剩余100-200μL悬浮菌液,涂布在含有Amp(终浓度50μg/mL,母液0.05g/mL)的LB固体培养基上,37℃培养箱12h左右 14)将转化后平板上长出的白色单菌落接种到含有氨苄青霉素的LB液体培养基中,37℃培养 15)取培养3h的培养物1μL作为PCR反应的模板,PCR反应引物及反应程序见前所述 16)PCR反应结束后,1.0%琼脂糖凝胶电泳检测,排除其中的假阳性克隆 17)送样至生工测序部,并备份保藏
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