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分子植物育种,2006年,第4卷,第3(S)期,第55-65页MolecularPlantBreeding,2006,Vol.4,No.3(S),55-65
专题介绍Review
植物肉桂酰辅酶A还原酶(CCR)基因的研究进展
李波
梁颖*柴友荣*
西南大学农学与生命科学学院,农业部生物技术与作物品质改良重点实验室,重庆市油菜工程技术研究中心,重庆,400716*通讯作者,yliang@swau.cq.cn,chaiyourong@sina.com
植物体内通过公共苯丙烷途径而进入木质素特异途径来合成木质素,这条代谢途径涉及到许多酶的参与,其中肉桂酰辅酶A还原酶(cinnamoyl-CoAreductase,CCR)是木质素特异途径的第一个关键酶,可催
摘
要
化3种羟基肉桂酸的CoA酯的还原反应,生成相应的肉桂醛。因此人们认为此酶可能对木质素合成途径的碳流具有潜在的调控作用,对木质素单体的生物合成起着重要作用。本文主要综述了CCR在木质素生物合成途径中的地位、CCR的分布、酶的提取和基本特性、CCR基因的克隆进展、CCR基因的转录特点、CCR启动子研究情况、转基因植物中表达抑制CCR基因的生物学效应等,并展望了CCR基因研究对于植物木质素研究、植物抗病和抗逆性研究、作物品质改良以及植被保护研究的意义。
关键词
进展,木质素,肉桂酰辅酶A还原酶(CCR),生物合成途径
AchievementsinResearchonPlantCinnamoyl-CoAReductase(CCR)Genes
LiBo
LiangYing*ChaiYourong*
ChongqingRapeseedTechnologyResearchCenter,KeyLabofBiotechnology&CropQualityImprovementofMinistryofAgriculture,CollegeofA-gronomyandLifeSciences,SouthwestAgriculturalUniversity,Chongqing,400716*Correspondingauthors,yliang@swau.cq.cn,chaiyourong@sina.com
AbstractLignininplantsissynthesizedviatheligninspecificbiosynthesispathwaywhichisjustdownstreamofthecommonphenylpropanoidpathway,andmanyenzymesareinvolvedinthisprocess.Cinnamoyl-CoAreductase(CCR)isthefirstkeyenzymeofligninspecificpathwayandcatalysestheconversionofthreekindsofhydroxycin-namoyl-CoAesterstocorrespondingcinnamaldehydes.Therefore,CCRisconsideredasapotentialcontrolpointregulatingtheoverallcarbonfluxintoligninpathway,thusitplaysanimportantroleinthebiosynthesisofmono-lignols.ThispapermainlyreviewsthepositionofCCRinligninbiosynthesispathway,CCRenzymedistribution,extractionandenzymecharacters,achievementsinCCRgenecloning,transcriptionalexpressionfeaturesofCCRgenes,statusofCCRpromoterresearches,aswellasbiologicaleffectsofsuppressedexpressionofCCRgenesintransgenicplants.Besides,applicationsofCCRgenesinplantligninresearch,researchonplantdiseaseresistancesandadversitytolerances,cropqualityimprovement,andresearchonenvironmentallyprotectivevegetations,areal-soprospected.
KeywordsAchievements,Lignin,Cinnamoyl-CoAreductase(CCR),Biosynthesispathway木质素是包围在木纤维等管束细胞和厚壁细胞壁外的一类多聚物质,是植物体中总量仅次于纤维素的第二大有机物,也是最大一类次生物质,占植物总生物量的30%。木质素对维管植物的生长发育是必要的,在陆生植物进化过程中是一个非常重要的因子,在地球碳循环中占有重要地位。木质素由苯丙烷衍生物以醚键或碳键(少数)连接而成,分子量从几百到几百万,与纤维素、半纤维素合称为“三素”,通
过光合作用储存在植物体内的太阳能中木质素约占
40%(AnterolaandLewis,2002;付伟等,2004)。在木本植物中木质素的含量约占27% ̄32%(绝对干原料重),草本植物中约占14% ̄25%(陈慧泉等,1996)。木质素参与细胞壁木质化过程,加大细胞壁的硬度或抗压强度,促进机械组织的形成,除参与形态建成外,其总体含量、各单体的比例对于植物抗倒伏、抗病和抗逆性具有重要影响。木质素含量过高使造纸
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分子植物育种
MolecularPlantBreeding
工业的污染增加,动物对饲草的消化吸收率降低,过高的木质素也影响一些作物的品质。研究木质素生物合成的分子机理,通过基因工程等手段对植物木质素的含量和单体比例进行调控,在造纸原料、作物适应性、作物品质等的改良方面具有重要的应用前景。木质素是苯丙烷代谢途径的重要产物之一,其生物合成涉及到许多酶的参与。肉桂酰辅酶A还原酶(cinnamoyl-CoAreductase,CCR,EC1.2.1.44)又叫阿魏酰辅酶A还原酶(feruloyl-CoAreductase)、对羟基肉桂酰辅酶A还原酶(ρ-hydroxycinnamoylcoen-zymeAreductase)、肉桂酰辅酶A:NADPH还原酶(cinnamoyl-CoA:NADPHreductase)。CCR是催化木质素特异途径的第一个限速酶(Lacombeetal.,1997),可能对木质素生物合成途径的碳流具有潜在的调控作用。20世纪70年代以来国内外从酶的提取与性质、基因克隆和转基因等方面对CCR的研究取得了一些进展,并逐渐成为植物木质素合成途径研究的一个热点,但关于CCR研究进展至今国内外尚缺少专门的综述性报道。本文就CCR的地位、CCR的酶学特性、CCR基因相关的性质以及CCR基因在造纸林木工程、作物品质改良和植被保护研究中的应用前景进行了综述。
即4CL(4-羟基肉桂酰辅酶A连接酶)的产物4-羟基肉桂酰辅酶A直接作为底物,先后经过CCR和CAD等的催化反应而形成(图1)。
而G-木质素和S-木质素的合成更为复杂,所涉及的酶更多。4-羟基肉桂酰辅酶A先要经过HCT(羟基肉桂酸转移酶)、C3H(对香豆酸3-羟化酶)、CCoAOMT(咖啡酰辅酶A甲基转移酶)等的催化反应形成阿魏酰辅酶A以后才被CCR和CAD催化形成G-木质素。在CAD反应之前或之后经过F5H(阿魏酸5-羟化酶)和COMTI(咖啡酸/5-羟基阿魏酸-0-甲基转移酶)的连续催化,才可以形成S-木质素。公共苯丙烷途径的第二个酶即C4H(肉桂酸4-羟化酶)的产物4-羟基肉桂酸有可能直接转化成咖啡酸,由COMTI、F5H催化形成阿魏酸或5-羟基阿魏酸,它们再先后被4CL、CCR和CAD所催化,也可以形成G-木质素或S-木质素(图1)。
虽然木质素的形成过程涉及到许多酶的参与,而且上述最新假设的木质素生物合成途径比经典假设的途径要复杂(Baucheretal.,1998;Lietal.,2000;Hoffmannetal.,2004),但3种羟基肉桂酸的CoA酯均要通过CCR完成木质素特异途径的第一步还原反应,生成相应的肉桂醛,所以CCR一直被认为是催化木质素单体生物合成途径的第一个特异步骤的酶,此酶可能对木质素生物合成途径的碳流具有潜在的调控作用(Lacombeetal.,1997;Abbottetal.,2002)。
1木质素单体生物合成途径及CCR的地位
苯丙烷复合途径可以产生类黄酮、花青素、木质素、植保素、原花青素(缩合单宁)等次生物质,在植物生长发育、抗病、抗逆反应中起着重要的作用。木质素的生物合成途径位于共公苯丙烷途径的下游,是苯丙烷途径的一个分支途径,与苯丙烷的其它分支途径如类黄酮途径等具有平行地位(图1)。
木质素主要由3种单体聚合而成。由于合成木
2CCR的酶学特性
2.1CCR的分布
自1972年以来,科学家们逐步推断并证明了CCR参与木质素的生物合成,并从连翘属、大豆等植物中纯化了CCR,研究了有关酶学性质(Mansellet
质素的单体不同,可将木质素分为3种不同的类型:al.,1972;EbelandGrisebach,1973;St!ckigtetal.,由紫丁香基丙烷单体聚合而成的紫丁香基木质素1973;RhodesandWooltorton,1974;Grossetal.,(syringyllignin,S-木质素)、由愈创木基丙烷单体聚1973;GrossandKreiten,1975;Wengenmayeretal.,合而成的愈创木基木质素(guaiacyllignin,G-木质1976)。随着分离纯化的方法不断完善,除连翘和大素)和由对-羟基苯基丙烷单体聚合而成的对-羟基豆外,现已成功地从白杨(Sarnietal.,1984)、桉树苯基木质素(hydroxyphenyllignin,H-木质素)(魏建(Goffneretal.,1994)、云杉(LuderitzandGrisebach,华和宋艳如,2001)。与此对应,这3种木质素单体分1981)、绿豆(Colratetal.,1999)等多种植物中分离纯别通过相互类似但又有差异的姊妹途径而合成。这3化得到CCR。关于植物器官和组织中CCR的分布特个姊妹途径最大的区别是利用的苯丙烷前体物不一点的系统研究不多,在桉树上发现CCR主要分布在样,但CCR的还原作用和CAD(肉桂醇脱氢酶)的脱木质部、厚壁组织中(Sarnietal.,1984)。氢作用是它们都必须经过的关键酶反应步骤。H-木
的分离纯化及活性测定
质素的合成代表了最简单的木质素合成途径,所涉2.2CCR及的酶最少,它利用公共苯丙烷途径的最后一个酶
Goffner等(1994)的分离方法具有一定的代表
植物肉桂酰辅酶A还原酶(CCR)基因的研究进展
AchievementsinResearchonPlantCinnamoyl-CoAReductase(CCR)Genes
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图1最新的苯丙烷代谢图,重点显示了不同木质单体的生物合成途径(Hoffmannetal.,2004)
注:通向木质素单体及主要产物的途径用粗箭头显示;双向箭头表示在3-羟基化步骤以后辅酶A(CoASH)、奎尼酸盐和莽草酸的循环利用;4CL:4-羟基肉桂酰辅酶A连接酶;C3H:对香豆酸3-羟化酶;C4H:肉桂酸4-羟化酶;CAD:肉桂醇脱氢酶;CCoAOMT:咖啡酰辅酶A甲基转移酶;CCR:肉桂酰CoA还原酶;COMTI:咖啡酸/5-羟基阿魏酸-O-甲基转移酶;F5H:阿魏酸5-羟化酶;HCT:羟基肉桂酸转移酶;PAL:苯丙氨酸解氨酶;SAD:芥子醇脱氢酶
Figure1Acurrentviewofphenylpropanoidmetabolismmainlyshowingbiosynthesispathwaystodifferentmonolignols
Note:Routetoligninsubunitsandmajorproductsisshowninboldarrow;Thedouble-headedarrowsillustratecoenzymeA(CoASH),quinate,andshikimaterecyclingafterthe3-hydroxylationstep;4CL:4-hydroxycinnamoyl-CoAligase;C3H:p-coumarate3-hydroxy-lase;C4H:Cinnamate4-hydroxylase;CAD:Cinnamyl-alcoholdehydrogenase;CCoAOMT:Caffeoyl-CoAO-methyltransferase;CCR:Cinnamoyl-CoAreductase;COMTI:Caffeic/5-hydroxyferulicacidO-methyltransferase;F5H:Ferulate5-hydroxylase;HCT:Hydrox-ycinnamoyltransferase;PAL:Pheammonia-lyase;SAD:Sinapyl-alcoholdehydrogenase
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分子植物育种
MolecularPlantBreeding
性。分离CCR的所有纯化步骤都在4℃条件下进行,计算。桉树CCR的理论分子量和等电点与纯化酶的把剥离下来的木质部放入研钵中,加入一定体积的测定值是一致的(Lacombeetal.,1997)。拟南芥的缓冲液,缓冲液中包括100mmol/LTris-HCl缓冲液(pH7.6)、2%的聚乙二醇(PEG)6000、5mmol/L二硫苏糖醇(Dithiothreitol,DTT)、2%的聚乙烯吡咯烷酮(polyvinylpolypyrrolidone,PVP),将这些木质部研磨成匀浆液,充分振荡搅拌30min,然后把提取液用两层纱布过滤,得到酶液初提物。用30%的饱和硫酸铵与酶液初提物一起搅拌混匀1h,15000r/min下高速离心30min,把上清液与70%的饱和硫酸铵溶液一起搅拌混匀1h,15000r/min高速离心30min,倒掉上清,把沉淀放进另一种缓冲液1(20mmol/LTris-HCl缓冲液,pH7.5,5mmol/LDTT,5%己二酸乙二醇)中
AtCCR1分子量为37.5kD,等电点为6.1,AtCCR2分
子量为36.6kD,等电点为6.09(Lauvergeatetal.,2001)。甘蔗的CCR分子量为40.1kD,等电点为5.67(Selman-Houseinetal.,1999)。黑麦草的CCR分子量为37.4kD,等电点为6.34(Larsen,2004b)。大麦的HvCCR分子量为37.7kD,等电点为6.15;而马铃薯的StCCR1分子量为36.5kD,等电点为7.1(Larsen,2004a)。至今没有文章明确说明CCR有没有信号肽以及亚细胞定位的情况,但CCR基因编码蛋白的理论分子量与纯化的CCR蛋白的分子量之间是一致的,说明CCR是单亚基酶(Sarnietal.,1984),CCR蛋
进行悬浮,然后在10000rpm离心15min,把上清液白没有剪切性的信号肽,翻译后也没有明显影响分
上PD10柱子(柱子要预先在缓冲液1中进行平衡),子量的肽链加工。用洗脱液进行脱盐处理。初步脱盐的酶液抽提物上另外一种柱子,用缓冲液1以10ml/h的速度洗脱,得到的酶液产物在36ml/h的速度下以浓度梯度为20 ̄1.5mmol/L的Tris-HC1(pH7.55,含5mmol/LDTT和5%乙二醇)进行洗脱,得到比较纯的酶液。
酶活性的测定通过紫外分光光度法,用100mmol/L磷酸钠缓冲液(pH6.25)提取,反应液总体积500μl(内含100mmol/L磷酸钠缓冲液(pH6.25)、0.1mmol/L烟酰胺腺嘌呤二核苷酸磷酸(NADPH)、70μmol/L阿魏酰辅酶A、5 ̄100μl酶液),在30℃反应2 ̄10min,测定在366nm的吸光度值。A366条件下图像呈线性下降趋势,能够反映CCR的活性(Goffneretal.,1994)。
关于CCR酶提取和测定的其它方法,可以参考文献(Grossetal.,1973;GrossandKreiten,1975;Wengenmayeretal.,1976;Sarnietal.,1984;Colratetal.,1999)的报道。
CCR维持活性的最适pH随着不同来源的植物有差异,大豆的CCR的最适pH值为6.0 ̄6.2(Wen-genmayeretal.,1976),杨树CCR在缓冲液中的最适pH值为6.0 ̄6.5(Sarnietal.,1984),而连翘CCR/FCR(feruloyl-CoAreductase)在磷酸钾测定缓冲液中的最适pH值为7.4 ̄7.8(GrossandKreiten,1975)。连翘和大豆CCR/FCR的催化反应不需要二价阳离子作为辅因子,添加EDTA对该酶的活性没有影响,但辅因子NADPH不能用NADH代替,CCR酶活性还受到反应产物NADP+和CoASH的反馈抑制(Wengenmayeretal.,1976;GrossandKreiten,1975)。
N-乙基顺丁烯二酰亚胺(N-ethylmaleimide,NEM)及4-氯汞基苯甲酸盐(4-chloromercuribenzoate,pCMB)等能和巯基反应的有机物可以不同程度地抑制CCR的活性,金属螯合物1,10-菲罗啉(1,10-phenanthro-line)也能不可逆地抑制白杨等植物的CCR(Sarnietal.,1984;Goffneretal.,1994)。此外,白杨CCR的活性还表现出受金属螯合物的抑制,添加Zn2+后能够
2.3CCR的基本特性
恢复酶活性,这一点与连翘CCR不一样。在桉树中
CCR的分子量最初是通过对提取的酶液进行电还发现,能与赖氨酸反应的试剂4,4-二异硫氰酸基泳分析来推断的。已报道的CCR分子量一般在30kD-2,2-1,2-二苯乙烯二磺酸盐(4,4-diisothio-以上,但随不同来源而稍有差异。桉树的CCR分子量cyano-2,2-stilbenedisulfonate,DIDS)也能不可逆地
等电点为7.0(Goffneretal.,1994),大豆抑制CCR的酶活性(Goffneretal.,1994)。大约为38kD,
的CCR分子量也大约为38kD(Wengenmayeretal.,不同植物的CCR的米氏常数(Km)不同,即使是1976)。白杨的CCR分子量为36kD,等电点为7.5同一植物的CCR对不同底物的Km也可能不同。桉(Sarnietal.,1984)。云杉的CCR分子量大约为38kD,树CCR对底物对-香豆酰辅酶A(p-courmaroyl等电点为6.25(LuderitzandGrisebach,1981)。CoA)的Km为28!mol/L,对阿魏酰辅酶A(feruloyl-
20世纪90年代以来,许多植物完成了CCR基CoA)的Km为37!mol/L,对芥子酰辅酶A(sinapyl-因的克隆,并对编码的CCR蛋白的基本特性进行了CoA)的Km为28!mol/L(Goffneretal.,1994)。大豆
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