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高糖高脂联合链脲佐菌素诱导2型糖尿病
材料与方法
1 实验材料 1.1 实验动物
雄性SPF级SD大鼠,8周龄,体重:180-220g,购自广东省医学实验动物中心 1.2 药品与试剂
链脲佐菌素 Sigma公司高糖
多聚甲醛 上海博谷生物科技有限公司
1.3 实验仪器 高脂饲料原料 广东省医学实验动物中心
血糖仪及血糖试纸 德国罗氏诊断公司
大鼠胰岛素酶联检测试剂盒 南京建成有限公司
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低速离心机 安徽中科中佳科技有限公司 2 实验方法 2.1 大鼠饲养
雄性SPF级SD大鼠30只,8周龄,体重:180-220g,实验动物房常规饲养,室温控制在25-27℃,40%-60%湿度,适应性喂养5天并观察,记录大鼠毛色、精神状态、体重、大小便等无异常后,随机分组:空白对照组(n=8只)和Ⅱ型糖尿病模型组(n=20只)。空白对照组始终喂SPF级普通大鼠饲料,Ⅱ型糖尿病大鼠模形组喂养高糖高脂饲料一个月。 2.2 链脲佐菌素的注射
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高糖高脂联合链脲佐菌素诱导2型糖尿病
一个月后两组中所有的大鼠12小时禁食不禁水,配置链脲佐菌素注射液:在无菌环境下将柠檬酸柠檬酸钠缓冲液进行过滤除菌,将0.5g链脲佐菌素溶于25ml的柠檬酸柠檬酸钠缓冲液中混匀即为20mg/ml的STZ溶液(现配先用,避光)。Ⅱ型糖尿病模形组大鼠进行腹腔注射小剂量链脲佐菌素(STZ,37mg/kg),空白对照组大鼠腹腔注射等体积柠檬酸柠檬酸钠缓冲液。 2.3 检测血糖
注射STZ 72 小时后检测空腹血糖,监测3周血糖值变化,选择FBG≥16.7 mmol/L为Ⅱ型糖尿病模型的合格标准。 2.4 口服糖耐量实验
在注射STZ 4周后经空腹血糖变化稳定后进行口服糖耐量试验,两组中所有大鼠禁食12小时后,单次灌胃葡萄糖2.3g/kg,分别在0、0.5、1、2 小时后血糖试纸取尾静脉的血检测血糖。 2.5检测大鼠血清胰岛素检测
大鼠血清胰岛素检测是STZ注射前及3周的空腹血糖变化稳定后进行尾静
脉采血后按试剂盒说明书进行检测,胰岛素抵抗的标准是:胰岛素敏感指数与对照组相比差异有显著性
2.6 大鼠胰腺组织形态学检测
构建Ⅱ型糖尿病模型实验结束后,采用眼球取血将部分大鼠处死,立即解剖大鼠,取大鼠胰腺组织在生理盐水中清洗干净后,以4%多聚甲醛溶液固定24小时。进行组织酒精梯度脱水:85%乙醇浸泡1h;90%乙醇浸泡2h;95%乙醇浸泡2h;无水乙醇浸泡2h。组织在树脂浸泡液中2h,梯度浸腊3h分为3次,石蜡常规包埋、切片,干燥后进行苏木素-伊红(HE)染色。HE染色步骤为:二甲苯(10分钟)、二甲苯(10分钟)、无水乙醇(2分钟)、无水乙醇(2分钟)、95%乙醇(2分钟)、90%乙醇(2分钟)、80%乙醇(2分钟)、70%乙醇(2分钟)、水洗(1分钟)、苏木素染色(5分钟)、水洗(1.5分钟)、盐酸酒精(1-2秒)、水洗(8分钟)、伊红染色(23秒)、水洗(1分钟)、70%乙醇(1-2
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高糖高脂联合链脲佐菌素诱导2型糖尿病
秒)、80%乙醇(1-2秒)90%乙醇(1-2秒)、95%乙醇(1-2秒)、无水乙醇(1-2秒)、烤片、用中性树胶封片,用显微镜观察组织形态学变化。 3数据处理
所有数据采用SPSS 19.0软件进行统计学分析,P<0.05时有统计学意义。
结 果
讨 论
结
论
参 考 文 献
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致 谢
本文的选题、课题研究及撰写工作是在邵敏导师的关怀和悉心指导下完成的。毕业论文期间,老师严谨的学风、渊博的知识和敏锐的思维使我受益终身。在此谨向邵敏老师致以崇高的敬意和衷心的感谢!
在课题的进行中,我还得到了研究生王新颖师姐的耐心指导和帮助。在此也向师姐表示最诚挚的谢意。
还要感谢在实验和生活中给予我帮助的同学及朋友。
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